1. ホーム
  2. コミュニティ
  3. 販売促進
  4. iPS細胞 疾患モデル:CRISPR編集と安定的なトランスフェクション

当社のin vitro疾患モデル研究プラットフォームは、多能性を保持したまま遺伝子編集iPS細胞を提供し、同系統の細胞株疾患モデルの作成を促進することが可能です。

人工多能性幹細胞(iPS細胞)は、特異な遺伝的背景を持つ細胞から得られ、特定の疾患表現型を再現するように調整できるため、疾患メカニズムの研究や細胞治療アプローチの開発に理想的なin vitroプラットフォームを提供します。

遺伝子編集技術と組み合わせることで、iPS細胞は疾患のメカニズムを探求し、効果的な新薬や細胞療法を開発するために利用することができます。Cyagen(サイヤジェン)のiPS細胞疾患モデル研究プラットフォームは、成熟した遺伝子編集技術と幹細胞培養システムを有しており、iPS細胞の培養、遺伝子改変、モノクローナル化に関する多くの困難を克服しています。

さらに、表現型解析、様々な疾患への応用を想定したin vitroモデルの構築・試験、薬効(薬物動態・薬力学)評価まで、新薬・細胞治療開発における前臨床CRO機能をワンストップで提供しています。プロジェクトの無料相談は、お問い合わせまたはメール([email protected])にて承っております。

タイプ プロジェクト 納期目安 品質管理(QC) ターンアラウンド ご注文
CRISPR遺伝子編集細胞株(iPS細胞) ノックアウト (KO) モノクローナルヘテロ接合体細胞株1株、チューブ2本(10^6/チューブ)、実験報告書 PCRおよびシークエンス、免疫蛍光染色 8-12週間
ポイントミューテーション(PM) 12-18週間
ノックイン(KI) 12-18週間
トランスフェクション・安定細胞株(iPS細胞) トランスフェクション・ノックダウン安定発現 トランスフェクション・安定細胞株、2チューブ/株(10^6/チューブ)、対照細胞株含む、実験報告書 定量PCR、免疫蛍光染色 細胞プール
9-11週間
モノクローナル
13-15週間
安定過剰発現株 細胞プール
8~10週間+遺伝子合成
モノクローナル
12~14週間+遺伝子合成
*核型分析、オフターゲット分析、フローサイトメトリー、ウェスタンブロット(WB)、ルシフェラーゼ、増殖、アポトーシス、細胞周期、移動・侵入など、ご要望に応じて提供可能です。
課題 サイヤジェンのソリューション
iPS細胞コロニーの構築:過酷な培養環境は、編集の過程で細胞が多能性を失い、分化してしまう可能性があります。 当社は、16年にわたる幹細胞培養の経験と、成熟したiPS細胞編集・培養システムを有しています。当社の培養システムにより、内部がコンパクトで、大きさが均一で、エッジがはっきりした理想的なiPS細胞コロニーを培養することができます。
iPS細胞の遺伝子編集:個体や組織ソースの異なるiPS細胞間の遺伝的差異が大きく、精密な遺伝子改変を行うには高い難易度が必要です。 サイヤジェンは、確立された安定した遺伝子編集プラットフォームを有し、1万件以上の遺伝子編集プロジェクトを経験し、iPS細胞プロジェクトにおける豊富な経験を有しています。
当社の優位性について:
1.Smart-CRISPR™ 細胞遺伝子編集システム:オフターゲットリスクの低い、高効率なgRNAを科学的に設計することができます。
2.当社独自のα-donor carrier homologyHDR)システム:HDR効率は市場平均を大きく上回る最大50%に達し、フットプリントフリーの修復を可能にします。
3.最適なトランスフェクション条件:トランスフェクション条件を最適化することで、トランスフェクション効率は50%以上、iPS細胞の生存率は80%に達することが可能です。RNPデリバリーシステム:gRNAの切断効率とトランスフェクションした細胞の生存率を高めるためにRNPデリバリーを選択し、オフターゲット効果を低減し、最大90%のKO効率を達成します。
シングルクローン形成:安定したモノクローナルiPS細胞培養の準備は複雑で、クローン形成率も低いことが課題でした。 当社独自のシングルセルスクリーニング技術により、モノクローンの形成率は30%以上に達し、1回のスクリーニングで十分な陽性クローンを得ることができます。
Smart-CRISPR™ システムで細胞遺伝子のノックアウト戦略を瞬時に設計

Smart-CRISPR™ 細胞遺伝子編集システム

包括的な遺伝子編集技術
数万件の遺伝子編集プロジェクトの成功事例を蓄積し、in vitro/in vivo研究のために最も複雑な遺伝子改変細胞株や齧歯類モデルを開発することができます。
最適化されたiPS細胞遺伝子編集システム
HDR効率50%以上、トランスフェクション効率50%以上、トランスフェクション生存率80%以上、KO効率90%以上のRNPデリバリーなど、iPS細胞の初期化に関するほぼすべての面で改良を加えています。
独自のSmart-CRISPR™テクノロジー
サイヤジェンは、人工知能(AI)を駆使したAlphaKnockout Gene Editing Expert SystemとCRISPR/Cas9技術を組み合わせ、アップグレードしたSmart-CRISPR™遺伝子編集システムを開発しました。Smart-CRISPR™は、CRISPR/Cas9技術単独よりも遺伝子切断効率が高く、細胞株におけるフレームシフト変異、断片ノックアウト、複数遺伝子ノックアウトなどの複数のノックアウト戦略を、最大90%の編集効率で容易に達成でき、タンパク質陽性残基などの問題を科学的に解決することが可能です。
迅速な納品
トランスフェクション・安定細胞株納品8週間以内、遺伝子ノックアウト納品8週間以内、遺伝子ノックイン納品12週間以内。
プロフェッショナルなプロジェクト管理
私たちのチームは、プロジェクト計画に関する問い合わせに24時間以内に対応することを目標としており、お客様にはプロジェクトの進捗状況を定期的に報告し、博士課程チームによる技術サポート、包括的な納品レポートを提供し、必要に応じて異なるクローン(ホモ接合体、ヘテロ接合体、対照)細胞を提供する能力を備えています。
① iPS-EGFP-KI細胞モデルの樹立
② iPS-hTNFAIP8L2-KO細胞モデルの樹立

CRISPR/Cas9遺伝子編集技術を用い、EGFP 蛍光マーカー(700 bp)をiPS細胞の遺伝子に挿入しました。図に示すように、エクソンE2の上流と下流にsgRNA、さらにEGFPを含むDonor配列も設計しました。sgRNAとDonorをRNP法でiPS細胞にトランスフェクトし、相同性指向性修復(HDR)経路を介して、エクソンE2配列の後半にEGFP配列を挿入しました。

図1.EGFPノックインスキームの設計

PCRとシークエンスによる同定を行った結果、エクソンE2配列の後にEGFPが挿入されたヘテロ接合体iPS細胞株が得られたことが判明しました。細胞培養後、Gバンド染色体解析(G-banding)を用いて核型検査を行ったところ、染色体数は46本と正常であり、明らかな構造異常はないことが確認されました。免疫蛍光染色により、3つの多能性(幹細胞関連)マーカー遺伝子NANOG、OCT4、SOX2の発現を検出し、陽性シグナルが観察されたことから、遺伝子編集ノックイン細胞は多能性を有することが示されました。

Marker
WT:2430bp; KI:3213bp

注意: プライマー設計方針は、EGFP配列全体と上流・下流ゲノム配列の一部を増幅することにあります。EGFPを挿入しない場合のバンドパターンは2430bpであり、EGFP挿入が成功すると、3213bpのバンドが生成されるはずです。結果、8つの単一クローン(番号1~8)は2430bpと3213bpの両方にバンドがあり、これらのクローンはEGFP挿入に成功しており、ヘテロ接合体クローンであることが示されました。

図2.iPS-EGFP KIアガロースゲル電気泳動による同定結果

KIバンド5'配列
AGGCAGAAACAGAAAAGAATGAAATATTCCGCCGGCAT--TGGAAGCGGAGCCACGAACTTCTCTCTGTTAAAGCAAGCA
KIバンド3'配列
CGCCGGGATCACTCTCGGCATGGACGAGCTGTACAAGTAA--AAGACTCTTGGCCTCTCCAGAGACGCCCCTTTCCTCGTCC

注意: KIバンド5'配列は、EGFP挿入断片の5'末端と上流ゲノム配列の一部の配列を表示し、KIバンド3'配列は、EGFP挿入断片の3'末端と下流ゲノム配列の一部で構成されています。KIバンド5'配列とKIバンド3'配列の塩基配列解析の結果、いずれもEGFPと一致し、ピークが重なっていることから、このクローンはEGFP挿入断片のヘテロ接合体クローンであることが証明されました。

図3: iPS-EGFPのKI配列決定結果

図4: iPS-EGFPの核型解析(細胞培養後の細胞に対してG-bandingを用いて染色体解析を行ったところ、染色体数は46本と正常であり、染色体構造にも明らかな異常はないことが判明)

図5:iPS-EGFPの多能性マーカーの免疫蛍光染色(多能性マーカー遺伝子であるNANOG、OCT4、SOX2の3つを検出するために免疫蛍光染色を行ったところ、3つのマーカーすべてで陽性シグナルが検出され、トランスフェクトした細胞が多能性を有することが判明)

CRISPR/Cas9遺伝子編集技術を用いて、ヒトTNFAIP8L2遺伝子をiPS細胞でノックアウトしました。TNFAIP8L2のエクソン2に2つのsgRNAをセットし、small fragment deletion法によりエクソン2の300bpを削除しました。TNFAIP8L2遺伝子がノックアウトされたホモ接合体IPS細胞は、PCRおよびシークエンスにより確認しました。さらに、免疫蛍光染色により多能性マーカーであるNANOG、OCT4、SOX2の陽性シグナルを検出することで、ノックアウト細胞の多能性についても確認されました。

図1.hTNFAIP8L2削除戦略

図2. iPS-hTNFAIP8L2-KOのシークエンス検出結果

図3. iPS-hTNFAIP8L2-KOの多能性検出について

詳細はこちら
マウスモデルカタログ