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遺伝子研究向けCre floxマウスモデル

遺伝子発現を時間的・空間的に制御します。Cre/loxPシステムにより、特定組織および規定した時点で遺伝子を改変できます。Cre/loxP組換え技術を活用することで、標的遺伝子改変を可能にする遺伝子改変マウスを作製できます。すべての実験が前進し、すべての改変が重要です。

研究即応の納品

X時間以内の迅速出荷、包括的な健康レポート付属、技術サポートへの直接アクセスを提供します。

検証済みの高性能

全系統をPCRおよびシーケンスで検証し、繁殖ドキュメント一式を提供し、胚細胞系列伝達を保証します。

部位特異的制御

ターゲット遺伝子を正確に捉え、その発現時期を制御します。これにより、発生段階に悪影響を及ぼすことなく、コンディショナルノックアウトを行うことが可能です。
製品
FAQs
多様なCreマウス系統:条件付き遺伝子操作への第一歩
通常型Creから誘導型バリアントまで、当社の検証済みマウスラインは、循環器、神経科学、眼科研究にわたり組織特異的な遺伝子操作を可能にします。各ラインには包括的な発現データと繁殖検証が付属し、実証された遺伝学的精度でコンディショナルノックアウトおよびノックイン研究を支援します。
Cre-loxP組換えシステム完全ガイド
Cre-loxP組換えシステムは、特定の組織・細胞・発生段階において遺伝子機能を解析するための重要な技術です。本資料では、CreリコンビナーゼとloxP配列による組換えの基本原理をはじめ、条件付きノックアウト/ノックインマウス、Creドライバーマウス、誘導型CreERシステム、PCRジェノタイピング、蛍光レポーターを用いた組換え検証、タモキシフェン誘導時の注意点までを体系的に解説しています。実験設計からモデル選択、検証、トラブルシューティングまで、Cre-loxP関連研究を進めるうえで役立つ実用的なガイドです。
関連製品・サービスのご案内
MouseAtlasモデルライブラリ
検索およびカスタマイズされた遺伝子改変マウス系統のアクセス
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機能解析に最適であり、特定遺伝子を完全にノックアウトした遺伝子改変マウス
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スケーラブルなコロニー拡大と完全なゲノタイピング対応
凍結保存および回復
必要に応じて、ラット・マウス系統を保存・回復します
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げっ歯類フェノタイピング
マウス・ラットモデルにおける包括的解析
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カスタムゲノム編集に加え、完全な検証およびトランスジェニック支援を提供
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多様なCreマウス系統:条件付き遺伝子操作への第一歩

通常型Creから誘導型バリアントまで、当社の検証済みマウスラインは、循環器、神経科学、眼科研究にわたり組織特異的な遺伝子操作を可能にします。各ラインには包括的な発現データと繁殖検証が付属し、実証された遺伝学的精度でコンディショナルノックアウトおよびノックイン研究を支援します。
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ベース系統
カタログ番号
カタログ番号名称ベース系統発現組織/細胞操作
C001650Alas2-P2A-EGFP-T2A-iCreC57BL/6JCyaBone marrow, red blood cells and Alas2-positive cells
C001529Adipoq-iCreC57BL/6JCyaAdipocytes
C002054Adipoq-P2A-iCreERT2C57BL/6JCyaAdipocytes
I001112Aldh1l1-P2A-CreC57BL/6JCyaAstrocytes
I001062Adgrg2-P2A-CreC57BL/6NCyaTesticles
I001169Adgre1-P2A-CreERT2C57BL/6JCyaMacrophages
C001743Adgrl2-3xGGGGS-mCherryC57BL/6JCyaVarious tissues, including the brain and heart, and Adgrl2-positive cells
C001558Agrp-IRES-CreERT2-P2A-tdTomatoC57BL/6JCya--
I001165Aqp5-P2A-CreERT2C57BL/6JCyaAlveolar type I cells, salivary gland alveolar cells, and gastrointestinal stem cells
I001079Aire-P2A-CreERT2C57BL/6JCyaMedullary Thymic Epithelial Cells (mTECs)
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Cre-loxP組換えシステム完全ガイド
Cre-loxP組換えシステムは、特定の組織・細胞・発生段階において遺伝子機能を解析するための重要な技術です。本資料では、CreリコンビナーゼとloxP配列による組換えの基本原理をはじめ、条件付きノックアウト/ノックインマウス、Creドライバーマウス、誘導型CreERシステム、PCRジェノタイピング、蛍光レポーターを用いた組換え検証、タモキシフェン誘導時の注意点までを体系的に解説しています。実験設計からモデル選択、検証、トラブルシューティングまで、Cre-loxP関連研究を進めるうえで役立つ実用的なガイドです。

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ノックアウトマウス
機能解析に最適であり、特定遺伝子を完全にノックアウトした遺伝子改変マウス
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FAQs

Frequently Asked Questions (FAQs)

Creマウスは、機能喪失型および機能獲得型の両方の研究に利用できますか。
はい、Creマウスは機能喪失(ノックアウト)および機能獲得(過剰発現)の両方の研究にご利用いただけます。適切なマウスモデルを選定し、特定遺伝子を標的とすることで、多様な実験設定において遺伝子機能の解析が可能となります。
マウスにおけるCre再結合効率に影響を与える要因は何ですか。
Cre組換え効率は、組織タイプ、Cre発現レベル、特定のプロモーター配列の有無などの因子の影響を受けます。当社チームは、これらの変数を最適化して一貫性と再現性の高い結果を得るための専門的助言を提供します。
loxP配列間の距離は、遺伝子再結合効率にどのように影響するのでしょうか。
loxP配列間の距離は変動しますが、再結合効率を最適化するためには、相対的に近接していることが望ましいです。理想的な距離は、対象とする遺伝子および組織タイプによって異なります。当社では、ご研究の目的に最適な配置をご提案いたします。
研究のためにCre Loxマウスの交配を始める最適な方法は何ですか。
Cre Lox交配を開始するには、マウス系統の綿密な計画が必要です。適切なCre系統とfloxed系統を選定し、適切な遺伝子組換え(recombination)が得られるような戦略に従う必要があります。成功する交配のためのプロトコルや助言について、当社が支援可能です。
「Floxing」はCre/loxP遺伝子ノックアウトとどう違いますか。
「Floxing」とは、遺伝子の両側にloxP部位を挿入する工程を指します。一方、Cre/loxPノックアウトは、Cre酵素を用いてそれらのloxP部位に挟まれた遺伝子配列を除去することを指します。これにより、特定の組織や発生段階における標的化された条件付き遺伝子改変が可能になります。
すべてのCreマウスモデルが遺伝子ノックアウトを引き起こすのですか。
すべてのCreマウスが遺伝子ノックアウト用に設計されているわけではありません。多くのモデルはCreを用いてfloxed遺伝子を欠失させますが、条件付き遺伝子活性化(conditional gene activation)やその他の改変を目的としたモデルもあります。研究目的に基づいて適切なCreモデルを選択することが重要です。

引用データベース

Molecular Therapy: Methods & Clinical Development, March, 2025
Intracranial AAV administration dose-dependently recruits B cells to inhibit the AAV redosing
【その他】
Gut, February, 2025
E-twenty-six-specific sequence variant 5 (ETV5) facilitates hepatocellular carcinoma progression and metastasis through enhancing polymorphonuclear myeloid-derived suppressor cell (PMN-MDSC)-mediated immunosuppression
【その他】
Cell Death & Disease, February, 2025
Mcm5 mutation leads to silencing of Stat1-bcl2 which accelerating apoptosis of immature T lymphocytes with DNA damage
【その他】
Molecular Therapy, February, 2025
Single-cell data-driven design of armed oncolytic virus to boost cooperative innate-adaptive immunity against cancer
【その他】
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