Mstn-KO Mouse
一般名
Mstn-KO
製品ID
S-KO-18536
背景情報
C57BL/6JCya
系統ID
KOCMP-17700-Mstn-B6J-VA
状況
このマウス系統を論文で使用する場合は、「Mstn-KO Mouse(カタログ番号S-KO-18536)はサイアジェンから購入しました。」と引用してください。
製品タイプ
年齢
遺伝子型
性別
数量
標準的な配送方法では、少なくとも3匹のヘテロ接合体キャリアを保証しています。ホモ接合体キャリアや指定された性別の個体の繁殖サービスも利用可能です。
基本情報
系統名
Mstn-KO
系統ID
KOCMP-17700-Mstn-B6J-VA
遺伝子名
製品ID
S-KO-18536
遺伝子別名
Cmpt, Gdf8
遺伝子別名
C57BL/6JCya
NCBI ID
修正
Conventional knockout
染色体
Chr 1
表現型
アプリケーション
--
さらに
系統詳細
EnsemblトランスクリプトID
ENSMUST00000027269
NCBIトランスクリプトID
NM_010834
ターゲット領域
Exon 1
有効領域の大きさ
~0.5 kb
遺伝子研究の概要
Myostatin (MSTN), also known as Growth Differentiation Factor 8 (GDF-8), is a member of the transforming growth factor-β superfamily. It is a negative regulator of skeletal muscle growth and development, inhibiting the proliferation of myoblasts. Mutations in MSTN can lead to extensive skeletal muscle hyperplasia and hypertrophy, resulting in a "double-muscle" phenotype [1]. It is also involved in regulating energy homeostasis [5].
Mutations of the MSTN gene in various animals have been studied. In goats, TALENs technology was used to modify the MSTN gene, obtaining mutant cell lines and cloned goats with "double-muscle" phenotypes, which had increased muscle content [1]. In sheep, a MSTNDel73C mutation with FGF5 knockout via CRISPR/Cas9 led to a dominant "double-muscle" phenotype, promoting skeletal muscle myofiber hyperplasia [2]. In Hu sheep, the C-CRISPR system was used to generate MSTN-edited sheep with a double-muscled phenotype and enhanced AKT and suppressed ERK1/2 signaling in gluteus muscle [6]. In cattle, MSTN knockout cattle were produced via CRISPR-Cas9, and the MSTN mutation was transmitted from germ cells [4]. In athletes, the MSTN rs1805086 polymorphism was associated with the strength phenotype [3].
In conclusion, MSTN is a crucial negative regulator of skeletal muscle growth. Studies using gene-edited animal models have revealed its significant role in muscle development, energy homeostasis, and its potential association with athletic performance. These findings may have implications for livestock breeding, muscle-related disease treatment, and understanding human physical capabilities [1,2,3,4,5,6].
References:
1. Song, Shao-Zheng, He, Zheng-Yi, Cheng, Yong, Zhang, Ting, Li, Dan. . MSTN modification in goat mediated by TALENs and performance analysis. In Yi chuan = Hereditas, 44, 531-542. doi:10.16288/j.yczz.22-011. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35729101/
2. Chen, Ming-Ming, Zhao, Yue, Yu, Kun, Lian, Di, Lian, Zheng-Xing. 2024. A MSTNDel73C mutation with FGF5 knockout sheep by CRISPR/Cas9 promotes skeletal muscle myofiber hyperplasia. In eLife, 12, . doi:10.7554/eLife.86827. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39365728/
3. Kruszewski, Marek, Aksenov, Maksim Olegovich. 2022. Association of Myostatin Gene Polymorphisms with Strength and Muscle Mass in Athletes: A Systematic Review and Meta-Analysis of the MSTN rs1805086 Mutation. In Genes, 13, . doi:10.3390/genes13112055. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36360291/
4. Gim, Gyeong-Min, Uhm, Kyeong-Hyun, Kwon, Dong-Hyeok, Lee, Won-Wu, Jang, Goo. 2022. Germline transmission of MSTN knockout cattle via CRISPR-Cas9. In Theriogenology, 192, 22-27. doi:10.1016/j.theriogenology.2022.08.021. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36037573/
5. Wang, Hui, Guo, Shanshan, Gao, Huanqing, Liu, Tiemin, Kong, Xingxing. 2024. Myostatin regulates energy homeostasis through autocrine- and paracrine-mediated microenvironment communication. In The Journal of clinical investigation, 134, . doi:10.1172/JCI178303. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38889010/
6. Guo, Rihong, Wang, Huili, Meng, Chunhua, Zhong, Jifeng, Cao, Shaoxian. 2023. Efficient and Specific Generation of MSTN-Edited Hu Sheep Using C-CRISPR. In Genes, 14, . doi:10.3390/genes14061216. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37372396/
品質管理基準
精子検査
凍結前の精子濃度を測定し、精子の生存能力の判定します。
凍結後の精子では、各バッチから1本の凍結保存された精子を選び出し、体外受精に使用します。
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