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細胞・遺伝子治療

XLRPモデルにおけるAAV遺伝子編集が網膜変性を回復

Cyagen Technical Content Team | July 12, 2025
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目次
01. 基礎的研究アイデア 02. RPGRノックアウトマウスモデルの構築 03. RPGRノックアウトマウスモデルの病変表現型 04. AAV-ターゲットゲノム編集ProによるRPGR変異由来網膜変性の効果的治療 05. 結論 06. Cyagen網膜遺伝子療法ソリューション 07. Cyagenの遺伝子療法ワンストップソリューション

網膜色素変性GTPase調節因子(RPGR)遺伝子の変異はX連鎖網膜色素変性症(XLRP)と関連しており、網膜色素変性症(RP)全体の10~20%を占め、最も重度の形態の一つである。本稿では、RPGR遺伝子変異に起因するXLRPに対する潜在的な遺伝子療法の開発に至るまでの研究プロセスを概説する。

研究者らはRPGR変異マウスモデルを構築した。代表的な表現型を表現型解析により確認した後、再組換えアデノ随伴ウイルス(rAAV)を用いて修復システムを病変モデルマウスに投与した。相同性依存修復(HDR)を用いた解析により、AAV-ターゲットゲノム編集Proを介した遺伝子編集療法が優れた治療効果を示した。本研究は、RPGR遺伝子変異に起因するXLRPに対する新たな遺伝子療法の可能性を示し、この疾患に苦しむ患者に希望をもたらした。

1. 基礎的研究アイデア

❖RPGRノックアウト(KO)マウスモデルを構築。この塩基の欠失により翻訳の早期終了が生じ、ノンアレルとして機能する。表現型解析により、光受容体の変性および光受容体タンパク質の異常発現が確認された。

❖AAV-ターゲットゲノム編集Proを用いた遺伝子編集療法は、光受容体細胞の変性などの症状を効果的に予防・治療可能である。

2. RPGRノックアウトマウスモデルの構築

研究者らはRPGR遺伝子のエクソン8を標的とする2つのsGuide分子を設計した(図1A)。その後、in vitroで転写したCas9 mRNAとsGuide分子をC57BL/6Jマウスの受精卵に注射し、RPGRノックアウトマウスモデルを構築した。Sangerシークエンシング解析により、モデルの成功構築が確認された(図1B)。

次なる研究に向け、エクソン8に5bpの欠失(c.974_978delAAATT;p.K325Nfs*1)を有するマウスを選定した(図1C)。WTマウスと比較して、RPGRの発現および局在を解析した結果、WTマウスでは接続セイル部に杆状の免疫反応が認められ、明るい点状の発現が観察された。一方、RPGRノックアウト網膜ではRPGRの染色は認められなかった(図1D)。したがって、5bp欠失はRPGRの機能不全を引き起こすことが示された。

図1. RPGRノックアウトマウスモデルの構築と同定

3. RPGRノックアウトマウスモデルの病変表現型

研究者らは、5bp欠失マウスモデルに対して詳細な表現型解析を実施した。WTおよびRPGRノックアウト(KO)マウスの網膜眼底像を撮像した(図2A)結果、3か月齢のRPGR KOマウスでは、網膜眼底の全四象限に多数の小規模で均等に分布する黄白色斑点が認められた。光受容体の変性が進行するにつれ、これらの斑点は大きくなり、融合を示した。12か月齢では斑点は希薄化したが、過色素沈着が顕著に認められた。

組織学的評価としてWTおよびRPGR KOマウスの網膜断面を解析した結果、6か月齢では外核層(ONL)に軽度の加齢関連光受容体細胞減少が認められた。12か月齢では、RPGR KOマウスにおける光受容体細胞の喪失が顕著に確認された(図2B)。

ONL厚さを測定した結果、WTマウスと変異マウス間で有意な差が認められた(図2C)。形態的変性と並行して、電気視網膜図(ERG)による網膜機能評価も異常を示した。

暗順応ERGにおいて、3か月齢のRPGR KOマウスではWTマウスと有意差は認めなかったが、b波振幅は低下していた(図2D)。6か月齢では、a波およびb波振幅がさらに低下し、12か月齢ではほぼ記録不能なERG反応が観察された(図2E)。

図2. RPGRノックアウトマウスの網膜形態変化

6か月齢のRPGRノックアウト(KO)マウスでは、ロドプシン、M-オプシン、S-オプシンの発現が有意に低下しており、PNA染色も僅かにしか認められなかった。これは外側セグメントの整備性およびタンパク質安定性の低下と一致する。12か月齢のRPGR KOマウスでは、PNAおよびS-オプシン染色がさらに低下し、ロドプシンおよびM-オプシンの発現は僅かに確認されるにとどまった(図3)。

RPGR KOマウスの網膜形態および機能は、徐々に進行する加齢関連網膜変性を示す。6か月齢から顕著な変性変化が開始され、ヒトにおける進行性網膜変性を模倣する可能性が高い。したがって、本RPGRノックアウトマウスモデルは、遺伝子編集療法研究に適した優れた動物モデルシステムである。

図3. RPGRノックアウトマウスにおける光受容体細胞の変性

4. RPGR変異由来網膜変性はAAV-ターゲットゲノム編集Proによって効果的に治療可能

変異RPGR座標を標的とするsGuide分子発現カセットおよび修復ドナーテンプレートを、2種類の別個のAAV2/8ベクターを用いて6か月齢のRPGR-/yCas9+/WTマウスに投与した(図4A~D)。

図4. 治療戦略
治療開始後6か月経過した後、同一眼の未治療領域と比較して、治療領域における光受容体層の数が顕著に増加していた(未治療領域:4層、緩やかに配置;治療領域:9層)(図5A、5B)。治療領域のONLは未治療領域よりも著しく厚くなった。光受容体細胞密度は治療領域で316核/100µmと測定され、未治療領域(128核/100µm)の1.5倍に上昇した(図5C)。免疫蛍光解析により、RPGR、PNAおよびM-オプシンの発現が回復していることが確認された(図5D)。
図5. 治療後6か月における病変マウスの網膜構造の回復
治療後12か月に網膜形態を評価した結果、RPGRおよびPNA染色が断面の約3/4にわたって広がっていた(図6A、6B)。治療領域の光受容体細胞密度は261核/100µmであり、未治療領域(87核/100µm)の3倍に上昇した(図6C)。これらのデータから、ターゲットゲノム編集Proを介したRPGR遺伝子編集療法が光受容体変性を予防し、長期にわたる持続効果を示すことが示唆された。
図6. 治療後12か月における病変マウスの網膜構造の改善

5. 結論

本研究は明確な研究構想を有している。まず、進行性網膜変性を再現する代表的なマウスモデルを構築し、表現型的に検証した後、AAVを用いてターゲットゲノム編集Pro修復システムを眼に投与し、効果的な治療を実施した。このように、網膜疾患の治療ターゲットの同定には、有効な疾患モデルの構築が不可欠であることが示された。現在、マウスは遺伝子疾患モデル構築に最も広く用いられている。これは、ヒトゲノムとの高い相同性、低コスト、成熟したモデル構築システムといった要因による。治療法の開発は、通常AAVを用いて有効な遺伝子断片を投与する戦略が採られるが、SNP変異などに対応するターゲットゲノム編集Proを用いた修復戦略の研究開発も継続的に進展している。

Cyagen網膜遺伝子療法ソリューション

網膜遺伝子療法における長年の課題を解決するため、Cyagenは網膜遺伝子療法プラットフォームを積極的に展開。高精度な小動物網膜検査装置および専門技術者を備え、動物網膜遺伝子編集モデルの構築および眼内注射を提供している。薬物投与、サンプル採取、検査・解析を含む一連の前臨床標準化研究サービスにより、網膜遺伝子療法研究における多くの課題を解決できる。

皆様の努力と協力により、より多くの遺伝子療法が臨床試験へと進展し、先天性失明患者が早期に光を見出すことを心より願っている。無料プロジェクト相談は、400-680-8038または[email protected]までお問い合わせください。

Cyagen網膜遺伝子療法CROプラットフォーム
高精度網膜検査装置を備え、網膜検証サービスをフルレンジで提供。
インテリジェント希少疾患データセンターにより、網膜疾患情報の包括的検索を支援。
豊富な網膜疾患用ラット・マウスモデルにより、薬効検証実験の進行を加速。
専門の網膜薬効分析プラットフォームを備え、全工程における薬効分析のガイダンスを提供。
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Cyagenの遺伝子療法ワンストップソリューション

Cyagenのワンストップ遺伝子療法ソリューションは、遺伝子療法に従事する研究者に対して、遺伝子機能解析のための効率的な包括的ソリューションを提供する。ターゲットスクリーニングおよび機能研究、動物モデル構築、ウイルスベクター(AAV、LV、ADVなど)の設計・パッケージング、および交配・表現型解析を含む全工程のサービスを提供する。

遺伝子予測・検証プラットフォーム ウイルスベクター設計・開発 カスタム動物モデル構築サービス 効果評価
  • AI解析:ゲノタイプから表現型の予測
  • ターゲット検証モデルの構築
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  • AAV血清型の迅速スクリーニング
  • AAVベクター最適化
  • AAVパッケージング(研究用)
  • LVおよびADVベクターの最適化パッケージング
  • ウイルスベクターのin vitro検証
  • 希少疾患用マウス・ラットモデル
  • 神経疾患用マウス・ラットモデル
  • 薬物誘導および手術モデル
  • 腫瘍免疫用マウス・ラットモデル
  • 代謝疾患用マウス・ラットモデル
  • カスタムマウス・ラットモデル
  • AAVベクターのin vivo投与
  • 生理学的・病態学的検査
  • 分子検査
  • 行動検査
  • その他の特定疾患表現型検査

引用文献

Hu S, Du J, Chen N, et al. In Vivo Targeted Gene Editing/Cas9-Mediated Genome Editing Mitigates Photoreceptor Degeneration in a Mouse Model of X-Linked Retinitis Pigmentosa. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2020;61(4):31.
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